Euthanasia reptilia dan amfibia
reptilia

Euthanasia reptilia dan amfibia

Tinjauan umum mengenai isu euthanasia dalam herpetologi veterinar

Terdapat banyak sebab untuk membunuh reptilia. Di samping itu, terdapat banyak cara untuk menyelesaikan tugas ini. Teknik yang sesuai untuk satu tujuan mungkin tidak sesuai untuk tujuan yang lain. Perkara yang paling penting, tanpa mengira punca dan kaedah, adalah pendekatan berperikemanusiaan terhadap euthanasia.

Petunjuk untuk euthanasia, sebagai peraturan, adalah penyakit yang tidak dapat diubati yang menyebabkan penderitaan kepada haiwan. Juga, prosedur ini dijalankan untuk tujuan penyelidikan atau sebagai sebahagian daripada penyembelihan haiwan untuk tujuan makanan atau industri di ladang. Terdapat banyak kaedah untuk menjalankan prosedur ini, tetapi prinsip utama mereka adalah untuk meminimumkan kesakitan dan penderitaan haiwan yang tidak perlu dan kelajuan atau kelancaran proses.

Petunjuk untuk euthanasia mungkin termasuk kecederaan serius, peringkat penyakit pembedahan yang tidak boleh dikendalikan, jangkitan yang mendatangkan bahaya kepada haiwan atau manusia lain, serta koma pada penyu yang kurus kering.

Proses ini mesti dijalankan dengan betul, kerana kadang-kadang bedah siasat haiwan itu diperlukan dengan keputusan direkodkan, dan prosedur yang tidak dilakukan dengan betul boleh mengaburkan ciri gambaran patoanatomi penyakit yang disyaki.

 Euthanasia reptilia dan amfibia
Euthanasia melalui suntikan ke dalam otak melalui mata parietal Sumber: Mader, 2005Euthanasia dengan memenggal kepala selepas bius Sumber: Mader, 2005

Euthanasia reptilia dan amfibia Titik aplikasi untuk suntikan ke dalam otak melalui mata parietal (ketiga) Sumber: D.Mader (2005)

Otak penyu dapat mengekalkan aktivitinya untuk beberapa waktu di bawah keadaan kebuluran oksigen, yang mesti diambil kira, kerana terdapat kes kebangkitan haiwan secara tiba-tiba selepas "prosedur terakhir"; apnea sahaja tidak mencukupi untuk kematian. Sesetengah pengarang asing menasihatkan pembekalan larutan formalin kepada saraf tunjang atau anestetik, bersama dengan ubat pilihan untuk euthanasia, dan juga membuat spekulasi tentang penggunaan garam kalium dan magnesium sebagai agen kardioplegik (untuk mengurangkan kemungkinan memulihkan fungsi pengepaman jantung) untuk mengelakkan terjaga. Kaedah penyedutan bahan meruap untuk penyu tidak digalakkan atas sebab penyu boleh menahan nafas untuk jangka masa yang cukup lama. Fry dalam tulisannya (1991) menunjukkan bahawa jantung terus berdenyut untuk beberapa lama selepas prosedur euthanasia, yang memungkinkan untuk mengumpul darah jika perlu untuk penyelidikan untuk tujuan analisis bedah siasat kes klinikal. Ini juga mesti diambil kira semasa memastikan kematian.

Jelas sekali, sesetengah penyelidik di bawah euthanasia bermaksud pembunuhan terus dengan kerosakan fizikal pada otak dengan bantuan alat, dan prosedur yang diterima pakai dalam perubatan veterinar dilakukan sebagai penyediaan haiwan itu.

Terdapat banyak garis panduan untuk euthanasia reptilia yang diterbitkan di Amerika Syarikat, tetapi tajuk "standard emas" masih diberikan oleh ramai pakar kepada monograf Dr. Cooper. Untuk premedikasi, pakar veterinar asing menggunakan ketamin, yang memudahkan penghantaran ubat utama ke dalam urat, dan juga mengurangkan tekanan pada haiwan dan menghalang pemilik daripada kebimbangan yang tidak perlu jika dia hadir pada prosedur euthanasia. Seterusnya, barbiturat digunakan. Sesetengah pakar menggunakan kalsium klorida selepas pemberian anestetik. Ubat-ubatan diberikan dalam pelbagai cara: secara intravena, dalam apa yang dipanggil. mata parietal. Penyelesaian boleh diberikan secara intraselom atau intramuskular; terdapat pendapat bahawa laluan pentadbiran ini juga berkesan, tetapi kesannya datang dengan lebih perlahan. Walau bagaimanapun, seseorang harus mengambil kira hakikat bahawa dehidrasi, hipotermia atau penyakit (yang, sebenarnya, sentiasa terletak pada tanda-tanda untuk euthanasia) boleh menjadi perencat penyerapan dadah. Pesakit boleh diletakkan di dalam ruang penghantaran anestetik penyedutan (halotana, isoflurane, sevoflurane), tetapi teknik ini boleh menjadi sangat panjang kerana, seperti yang dinyatakan di atas, sesetengah reptilia dapat menahan nafas dan memasuki proses anaerobik, yang memberi mereka sedikit masa untuk mengalami apnea; ini terutamanya terpakai kepada buaya dan penyu akuatik.

Menurut D.Mader (2005), amfibia, antara lain, dibunuh dengan menggunakan TMS (Tricaine methane sulfonate) dan MS – 222. Cooper, Ewebank dan Platt (1989) menyebut amfibia akuatik juga boleh dibunuh di dalam air dengan natrium bikarbonat. atau tablet Alco-Seltzer. Euthanasia dengan TMS (Tricaine methane sulfonate) menurut Wayson et al. (1976) paling tidak tertekan. Pentadbiran intracelomik TMS yang disyorkan pada dos 200 mg/kg. Penggunaan etanol dalam kepekatan lebih daripada 20% juga digunakan untuk euthanasia. Pentobarbital diberikan pada dos 100 mg/kg secara intraselom. Ia tidak disukai oleh sesetengah ahli patologi kerana ia menyebabkan perubahan tisu yang sangat mengaburkan gambaran patologi (Kevin M. Wright et Brent R. Whitaker, 2001).

Dalam ular, T 61 diberikan secara intrakardial (intramuskular atau intracelomically seperti yang diperlukan, juga ubat disuntik ke dalam paru-paru. Untuk ular berbisa, penggunaan ubat yang disedut atau bekas dengan kloroform adalah lebih baik jika ia tidak tersedia. T 61 juga dihidangkan kepada cicak dan kura-kura. Berhubung dengan buaya yang sangat besar, sesetengah penulis menyebut tentang tembakan di belakang kepala, jika tidak ada cara lain. Sukar untuk kita menilai euthanasia reptilia yang sangat besar dengan menembak dari senjata api, walaupun dari sisi ekonomi isu, jadi kami akan mengelak daripada mengulas mengenai isu ini khususnya. Pembekuan juga mempunyai tempat di kalangan teknik euthanasia reptilia. Kaedah ini telah tersebar luas di kalangan penggemar. Cooper, Ewebank, dan Rosenberg (1982) telah menyatakan ketidakpercayaan manusia terhadap kaedah ini, walaupun pesakit disediakan sebelum penempatan di dalam ruang, kerana fakta bahawa pembekuan dalam peti sejuk mengambil masa yang lama.Untuk pembekuan, mereka lebih suka meletakkan haiwan dalam nitrogen cecair. Walau bagaimanapun, jika tiada alternatif, kaedah ini kadang-kadang digunakan selepas membius haiwan itu.

 Euthanasia reptilia dan amfibia Salah satu cara untuk merosakkan otak dengan alat selepas pengenalan haiwan ke dalam anestesia. Sumber: McArthur S., Wilkinson R., Meyer J, 2004.

Pemenggalan kepala sememangnya bukan kaedah euthanasia yang berperikemanusiaan. Cooper et al. (1982) menunjukkan bahawa otak reptilia mungkin dapat merasakan kesakitan sehingga 1 jam selepas pecah dengan saraf tunjang. Banyak penerbitan menerangkan kaedah membunuh dengan merosakkan otak dengan alat yang tajam. Pada pendapat kami, kaedah ini berlaku dalam bentuk membekalkan penyelesaian kepada otak melalui suntikan ke mata parietal. Juga tidak berperikemanusiaan adalah pendarahan (daya maju sementara otak reptilia dan amfibia semasa hipoksia telah disebutkan di atas), pukulan kuat ke kepala dan penggunaan senjata api. Walau bagaimanapun, kaedah menembak dari senjata berkaliber besar ke mata parietal reptilia yang sangat besar digunakan kerana ketidakmungkinan melakukan manipulasi yang lebih berperikemanusiaan.

Kejayaan pelbagai teknik euthanasia (menurut Mader, 2005):

haiwan

Deep pembekuan

Pengenalan kimia  bahan-bahan

Rendaman dalam larutan

Penyedutan

Fizikal kesan

Kadal

<40 g

+

-

+

+

ular

<40 g

+

-

+

+

Penyu

<40 g

+

-

-

+

Buaya

-

+

-

-

+

Amfibia

<40 g

+

+

-

+

Merujuk kepada Haiwan Eksotik BSAVA (2002), skim euthanasia untuk reptilia yang diterima pakai di Barat boleh diringkaskan dalam jadual:

Masa latihan

Persediaan

dos

Laluan pentadbiran

1

Ketamine

100-200 mg / kg

dalam m

2

Pentobarbital (Nembutal)

200mg/kg

i/v

3

Kemusnahan instrumental otak

Vasiliev DB juga menerangkan gabungan dua peringkat pertama jadual (pembekalan Nembutal dengan pemberian awal ketamin) dan pentadbiran intrakardium barbiturat kepada penyu kecil. dalam bukunya Penyu. Penyelenggaraan, penyakit dan rawatan” (2011). Kami biasanya menggunakan rejimen yang terdiri daripada propofol intravena pada dos biasa untuk anestesia reptilia (5-10 ml/kg) atau ruang kloroform untuk cicak dan ular yang sangat kecil, diikuti dengan lidokain intracardiac (kadang-kadang intravena) 2% (2 ml/kg). ). kg). Selepas semua prosedur, mayat dimasukkan ke dalam peti sejuk beku (Kutorov, 2014).

Kutorov SA, Novosibirsk, 2014

Kesusasteraan 1. Vasiliev DB Turtles. Kandungan, penyakit dan rawatan. – M .: “Cetakan Akuarium”, 2011. 2. Yarofke D., Lande Yu. Reptilia. Penyakit dan rawatan. – M. “Cetakan Akuarium”, 2008. 3. BSAVA. 2002. Manual BSAVA Haiwan Kesayangan Eksotik. 4. Mader D., 2005. Perubatan dan pembedahan reptilia. Saunders Elsvier. 5. McArthur S., Wilkinson R., Meyer J. 2004. Perubatan dan pembedahan kura-kura dan penyu. Penerbitan Blackwell. 6. Wright K., Whitaker B. 2001. Perubatan amfibia dan tawanan tawanan. Penerbitan Krieger.

Muat turun artikel dalam format PDF

Sekiranya tiada doktor haiwan herpetologi, kaedah euthanasia berikut boleh digunakan – dos berlebihan 25 mg / kg mana-mana anestesia veterinar (Zoletil atau Telazol) IM dan kemudian ke dalam peti sejuk.

Sila tinggalkan balasan anda